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CRISPR/Cas9动物模型构建

简要描述:CRISPR/Cas9动物模型构建是一种基于CRISPR/Cas9基因编辑技术构建的实验动物模型。该技术通过向导RNA(gRNA)引导Cas9核酸酶靶向特定基因位点,实现精准的基因敲除、敲入或突变,从而在动物体内模拟人类疾病相关基因的变异或功能改变。

  • 更新时间:2025-07-09
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详细介绍

一、技术原理与核心突破

CRISPR/Cas9系统源于细菌适应性免疫机制,通过双RNA引导实现靶向DNA切割:

  1. 引导机制

    • crRNA(CRISPR RNA)识别靶序列,tracrRNA(反式激活crRNA)激活Cas9酶,两者可融合为sgRNA(单链引导RNA)。

    • PAM序列(5'-NGG-3')是Cas9切割的必要位点,位于靶基因下游。

  2. 切割模式

    • Cas9的HNH结构域切割互补链,RuvC-like结构域切割非互补链,形成双链断裂(DSB)。

  3. 修复路径

    • 非同源末端连接(NHEJ) :易产生插入/缺失突变(Indels),导致基因敲除。

    • 同源定向修复(HDR) :需提供同源修复模板(ssODN或载体),实现精准插入或点突变。

革命性突破:CRISPR/Cas9shou次实现哺乳动物细胞的高效、可编程基因编辑,且支持多靶点同步编辑。


二、动物模型构建策略与技术优化

(一)核心操作流程

(二)关键技术参数

步骤关键操作优化方案
sgRNA设计靶向基因外显子区,避开脱靶位点(工具:CRISPRscan)添加5'端G增强转录效率
编辑组件递送- mRNA注射:Cas9 mRNA + sgRNA(小鼠受精卵)
- 蛋白注射:Cas9-sgRNA核糖核蛋白(RNP)
RNP减少脱靶效应
同源重组增强联合注射ssODN(单链寡核苷酸)及重组增效剂(如RS-1)RS-1提升HDR效率3-5倍
胚胎移植C57BL/6品系受精卵 → 假孕母鼠(ICR或BALB/c)移植存活率>60%

 

(三)模型类型与构建效率

模型类型构建方法周期效率案例
基因敲除(KO)NHEJ修复诱导移码突变3-4个月80% F0代突变免疫缺陷鼠(Rag2/IL2rg双敲)
点突变模型HDR修复+ssODN模板4-6个月20-40%阿尔茨海默病(tau-V337M)
条件性敲除双sgRNA靶向flox区域 + Cre小鼠杂交6-8个月50% F1代重组肺癌模型(LoxP-Kras/p53)
大片段敲入BAC载体同源重组 + CRISPR切割>8个月10-15%人类疾病基因人源化模型

三、疾病模型应用与前沿案例

(一)肿瘤模型

  1. 肝癌

    • 同步靶向肝细胞抑癌基因 PTEN 和 P53,8周内诱发肝癌。

  2. 脑瘤

    • 多基因编辑(Ptch1/Trp53/Pten/Nf1)构建成神经管细胞瘤模型。

  3. 肺癌

    • 组织特异性模型:条件性Cas9小鼠 + AAV9递送sgRNA(靶向Kras/p53/Lkb1),实现肺组织特异性致癌。

(二)遗传病模型

疾病靶基因表型特征研究价值
白化病酪an酸酶(Tyr毛发/视网膜色素缺失基因治疗载体验证
威尔逊病ATP7B铜代谢障碍→肝损伤基因修复疗法测试
血友病乙F9(凝xue因子Ⅸ)出血倾向体内基因编辑疗效评估

(三)神经与代谢疾病

  • 阿尔茨海默病

    • MAPT突变模型:CRISPR/Cas9编辑小鼠tau蛋白基因,模拟神经纤维缠结。

  • 糖尿病

    • db/db小鼠改良:CRISPR精准引入Lepr突变,缩短模型构建周期至12周。


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